硫酸葡聚糖
硫酸葡聚糖
结构
硫酸葡聚糖以钠盐形式供应,使其在水中可溶且稳定。硫酸葡聚糖含有大约17%的硫,相当于每个葡糖基残基大约有2.3个硫酸基团。
葡聚糖是葡萄糖酐聚合物。由大约95%的α-D-(166)键组成。其余的(163)键组成了葡聚糖的分支1,2,3。 分支长度上的数据冲突提示平均分支长度是小于三个葡萄糖单位的4,5 。然而,其他方法表明也存在有超过50个葡萄糖单位的分支6,7。
较低分子量(MW)的葡聚糖分支较少4 并且MW分布范围更窄。8
在低离子强度溶液中,由于带负电的硫酸根基团的排斥,硫酸葡聚糖聚合物将会完全伸展。9 在高离子强度溶液中,聚合物会收缩并与去离子化葡聚糖更相似。9 在硫酸根基团的可滴定范围内的pH变化会引起膨胀和收缩。9硫酸葡聚糖的分子量可通过以下一种或多种方法进行测量:低角度激光散射10、尺寸排阻色谱11和粘度12。
产品信息
我们的葡聚糖来源于肠膜明串珠菌,菌株B 512。各种分子量由有限的水解和分馏生产。硫酸酯化反应在温和条件下进行。我们供应商采用的确切方法已申请专利。葡萄聚糖的分馏可以通过尺寸排阻色谱11 或乙醇分级,其中分子量最大的葡聚糖首先沉淀。17
储存方法/稳定性
如果在室温下适当保存,硫酸葡聚糖粉末将至少保持稳定两到三年。
溶解度/溶液稳定性
我们对100 mg/mL硫酸葡聚糖在水中的溶解度进行了测试。之后获得了透明溶液。 缓冲右旋糖酐水溶液可在 110-115 °C 下高压灭菌30至45分钟。8 葡聚糖可在高温下被强酸水解。硫酸葡聚糖对钙离子的亲和力高于对钠离子的亲和力。硫酸葡聚糖的钙盐是不溶的。8 硫酸葡聚糖的游离酸(氢)形式酸性很强,在溶液中会如粉末一样迅速自动水解。8
应用
脂蛋白分离
硫酸葡聚糖通常用于选择性沉淀脂蛋白。
在存在0.05%硫酸葡聚糖(MW 15000)和0.05M MnCl2的条件下,VLDL和LDL会发生沉淀。从而将最终浓度增加至0.65%硫酸葡聚糖0.2M MnCl2,导致HDL继续沉淀。14
硫酸葡聚糖(分子量500,000)同样可用于测定HDL胆固醇。15
杂交
加入终浓度为10%的硫酸葡聚糖可加速标记探针与膜固定化DNA的杂交。16 我们可提供分子生物学级的硫酸葡聚糖(分子量500,000)(货号D8906)用于该应用。
其他核酸相关应用
硫酸葡聚糖已被证明可从DNA-组蛋白复合物中释放DNA。17 硫酸葡聚糖可抑制RNA与核糖体的结合。18,19 它还是一种有效的核糖核酸酶抑制剂20,并已被用于分离核糖体。21
其他应用
硫酸葡聚糖与聚乙二醇被一起用于细菌、病毒、蛋白质和核酸的双相聚合物分离。22
已经研究了这对细胞增殖的影响。23
已证明其可与纤维蛋白原形成不溶性复合物。24
并发现硫酸葡聚糖可与病毒结合并抑制对易感细胞的初始吸附。25
参考文献
1.
Rankin JC, Jeanes A. 1954. Evaluation of the Periodate Oxidation Method for Structural Analysis of Dextrans. J. Am. Chem. Soc.. 76(17):4435-4441. http://dx.doi.org/10.1021/ja01646a046
2.
Dimler RJ, Wolff IA, Sloan JW, Rist CE. 1955. Interpretation of Periodate Oxidation Data on Degraded Dextran. J. Am. Chem. Soc.. 77(24):6568-6573. http://dx.doi.org/10.1021/ja01629a044
3.
Van Cleve JW, Schaefer WC, Rist CE. 1956. The Structure of NRRL B-512 Dextran.Methylation Studies2. J. Am. Chem. Soc.. 78(17):4435-4438. http://dx.doi.org/10.1021/ja01598a064
4.
Lindberg B, Svensson S, Sjövall J, Zaidi NA. 1968. Structural Studies on Dextran from Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512.. Acta Chem. Scand.. 221907-1912. http://dx.doi.org/10.3891/acta.chem.scand.22-1907
5.
Larm O, Lindberg B, Svensson S. 1971. Studies on the length of the side chains of the dextran elaborated by Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512. Carbohydrate Research. 20(1):39-48. http://dx.doi.org/10.1016/s0008-6215(00)84947-2
6.
Bovey FA. 1959. Enzymatic polymerization.I. Molecular weight and branching during the formation of dextran. J. Polym.Sci.. 35(128):167-182. http://dx.doi.org/10.1002/pol.1959.1203512813
7.
Senti FR, Hellman NN, Ludwig NH, Babcock GE, Tobin R, Glass CA, Lamberts BL. 1955. Viscosity, sedimentation, and light-scattering properties of fraction of an acid-hydrolyzed dextran. J. Polym.Sci.. 17(86):527-546. http://dx.doi.org/10.1002/pol.1955.120178605
8.
Supplier’s data.
9.
Katchalsky A. 1964. Polyelectrolytes and Their Biological Interactions. Biophysical Journal. 4(1):9-41. http://dx.doi.org/10.1016/s0006-3495(64)86924-1
10.
Allen P. 1959. Techiques of Polymer Characterization. Butterworths Scientific Publications.
11.
Granath KA, Flodin P. 1961. Makromol.Chem.. 48(1):160-171. http://dx.doi.org/10.1002/macp.1961.020480116
12.
Granath KA. 1958. Solution properties of branched dextrans. Journal of Colloid Science. 13(4):308-328. http://dx.doi.org/10.1016/0095-8522(58)90041-2
13.
Cramér H. 1949. On the factorization of certain probability distributions. Ark. Mat.. 1(1):61-65. http://dx.doi.org/10.1007/bf02590468
14.
Burstein M, Scholnick HR, Morfin R. 1970. Rapid method for the isolation of lipoproteins from human serum by precipitation with polyanions. J Lipid Res. 11 (6)583-95.
15.
Warnick GR, Benderson J, Albers JJ. 1982. Dextran sulfate-Mg2+ precipitation procedure for quantitation of high-density-lipoprotein cholesterol.. 28(6):1379-1388. http://dx.doi.org/10.1093/clinchem/28.6.1379
16.
Wahl GM, Stern M, Stark GR. 1979. Efficient transfer of large DNA fragments from agarose gels to diazobenzyloxymethyl-paper and rapid hybridization by using dextran sulfate.. Proceedings of the National Academy of Sciences. 76(8):3683-3687. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.76.8.3683
17.
Kent PW, Hichens M, Ward PFV. 1958. Displacement fractionation of deoxyribonucleoproteins by heparin and dextran sulphate. 68(4):568-572. http://dx.doi.org/10.1042/bj0680568
18.
Vazquez D, Monro R. 1967. Effects of some inhibitors of protein synthesis on the binding of aminoacyl tRNA to ribosomal subunits. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Nucleic Acids and Protein Synthesis. 142(1):155-173. http://dx.doi.org/10.1016/0005-2787(67)90524-2
19.
Miyazawa F, Olijnyk O, Tilley C, Tamaoki T. 1967. Interactions between dextran sulfate and Escherichia coli ribosomes. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Nucleic Acids and Protein Synthesis. 145(1):96-104. http://dx.doi.org/10.1016/0005-2787(67)90658-2
20.
Philipson L, Kaufman M. 1964. The efficiency of ribonuclease inhibitors tested with viral ribonucleic acid as substrate. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Specialized Section on Nucleic Acids and Related Subjects. 80(1):151-154. http://dx.doi.org/10.1016/0926-6550(64)90207-5
21.
Ascione R, Arlinghaus RB. 1970. Characterization and cell-free activity of polyribosomes isolated from baby hamster kidney cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Nucleic Acids and Protein Synthesis. 204(2):478-488. http://dx.doi.org/10.1016/0005-2787(70)90168-1
22.
Walter H, Johansson G. 1986. Partitioning in aqueous two-phase systems: An overview. Analytical Biochemistry. 155(2):215-242. http://dx.doi.org/10.1016/0003-2697(86)90431-8
23.
SANDERS FK, SMITH JD. 1970. Effect of Collagen and Acid Polysaccharides on the Growth of BHK/21 Cells in Semi-solid Media. Nature. 227(5257):513-515. http://dx.doi.org/10.1038/227513a0
24.
Sasaki S, Noguchi H. 1959. Interaction of Fibrinogen with Dextran Sulfate. 43(1):1-12. http://dx.doi.org/10.1085/jgp.43.1.1
25.
Bengtsson S, Philipson L, Persson H, Laurent TC. 1964. The basis for the interaction between attenuated poliovirus and polyions. Virology. 24(4):617-625. http://dx.doi.org/10.1016/0042-6822(64)90216-8
订购明细
硫酸葡聚糖钠盐 来源于明串珠菌属
CAS No.:9011-18-1 规格-货号 用途说明
硫酸葡聚糖钠盐
D4911 分子量:6500-10000;
硫酸葡聚糖钠盐(从明串珠菌属某些种(Leuconostoc spp)提取)用于:
作为标准品,可用于进行碳水化合物(C-PAGE)的聚丙烯酰胺凝胶电泳和进行RNA 目标探测序列(SPOTs)成像,琼脂糖凝胶电泳,作为溶液成分,配制1%的注射缓冲液
订货编号
包装规格 单价
D4911-1G 1 g 1184.12
D4911-10G 10 g 2995.46
D4911-50G 50 g 8316.83
D4911-100G 100 g 14307.77
硫酸葡聚糖钠盐
D8906 for molecular biology, average Mw >500,000 (dextran starting material), contains 0.5-2% phosphate buffer;葡聚糖硫酸酯具有许多用途,当进行核酸杂交时可用作缩短探针退火所需时间的促进剂。当杂交速率成为检测稀有序列的限制因子时或当可用探针数量有限时,可在杂交缓冲液中加入葡聚糖硫酸酯。葡聚糖硫酸酯通过从聚合物所占溶液体积中扣除核酸而发挥促进剂的作用,从而提高有效的探针浓度。适用性
已测试了在核酸杂交中的适应性
订货编号 包装规格 单价
D8906-5G 5 g 694.29
D8906-10G 10 g 1081.91
D8906-50G 50 g 2627.97
D8906-100G 100 g 4201.11
D8906-500G 500 g 12510.5
硫酸葡聚糖钠盐
31404 Mr 5,000;葡聚糖硫酸钠盐来自Leuconostoc sp.,是一种聚合阴离子,作为测试试剂测试它自身的细胞膜外破坏细胞外包裹病毒(EEV)的能力。它还被用来评估TLR4单克隆抗体对于葡聚糖-硫酸盐-钠-(DSS)-引起的大肠炎影响。
订货编号 包装规格 单价
31404-5G-F 5 g 782.38
31404-25G-F 25 g 4669.44
硫酸葡聚糖钠盐
D6001 average mol wt >500,000 (dextran starting material), contains 0.5-2.0% phosphate buffer, pH 6-8;从明串珠菌属某些种(Leuconostoc spp)中提取的硫酸葡聚糖钠盐可用于:
使含脂肪的血浆脱脂,
诱发啮齿类动物远端结肠发生炎症和致癌反应,
制备3,4-乙撑二氧噻吩(EDOT)
订货编号 包装规格 单价
D6001-10G 10 g 1004.4
D6001-50G 50 g 2854.53
D6001-100G 100 g 4629.52
D6001-500G 500 g 14817.18
硫酸葡聚糖钠盐
31395 Mr ~500,000;EDQM级;来自明串珠菌属的硫酸葡聚糖钠盐用作研究肝素和硫酸葡聚糖与碱离子相互作用的测试化合物。它用于将DNA从DNA-组蛋白复合物中释放出来。
订货编号 包装规格 单价
31395-10G 10 g 990.26
31395-50G 50 g 3259.8
硫酸葡聚糖钠盐
42867 Mr ~40,000;用于选择性沉淀脂蛋白,探针杂交膜固定DNA,从DNA-组蛋白复合物中释放DNA,以及抑制RNA与核糖体结合。
订货编号 包装规格 单价
42867-5G 5 g 1938.29
42867-25G 25 g 7594.41
42867-100G 100 g 22307.42
硫酸葡聚糖钠盐
RES2029D-A7 Mw 8000g/mol,SAFC级,适用于细胞培养及哺乳动物,适用于生产
订货编号 包装规格 单价
RES2029D-A707X 10 g 3810.36
RES2029D-A701X 100 g 19402.1
RES2029D-A702X 1 kg 69808.01
硫酸葡聚糖钠盐
67578 应用
在原位杂交实验中使用硫酸葡聚糖作为稀释剂,以增加探针与组织中靶序列的杂交。硫酸葡聚糖常规用于脂蛋白的选择性沉淀、探针杂交膜固定 DNA、DNA 从 DNA-组蛋白复合物中释放以及抑制 RNA 与核糖体的结合。
订货编号 包装规格 单价
67578-5G 5 g 2096.84
67578-25G 25 g 7384.95
67578-100G 100 g 12517.08
硫酸葡聚糖钠盐
75027 硫酸葡聚糖常规用于脂蛋白的选择性沉淀、探针杂交膜固定 DNA、DNA 从 DNA-组蛋白复合物中释放以及抑制 RNA 与核糖体的结合。
订货编号 包装规格 单价
75027-5G 5 g 1612.96
75027-25G 25 g 5367.45
硫酸葡聚糖钠盐
51227 Mw 7,000-20,000;硫酸葡聚糖常规用于脂蛋白的选择性沉淀、探针杂交膜固定 DNA、DNA 从 DNA-组蛋白复合物中释放以及抑制 RNA 与核糖体的结合。
订货编号 包装规格 单价
51227-5G 5 g 1938.28
51227-25G 25 g 5506.41
51227-100G 100 g 16201.36